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> Stages de M1 > 1Stages proposés pour l’année 2018-2019 > Optimisation des techniques de congélation du tissu ovarien

Optimisation des techniques de congélation du tissu ovarien

proposé par Pr. Florence Brugnon, Laboratoire « Imagerie Moléculaire et Stratégie Théranostique » (IMoST)-INSERM 1240 »« Laboratoire de Biologie de la Reproduction, AMP-CECOS CHU Estaing 63003 CLERMONT FERRAND CEDEX 1

Projet de stage : situation du sujet, objectif du stage, approches expérimentales

Les récentes avancées thérapeutiques ont permis une amélioration de la survie des patientes atteintes d’un cancer du sein. Néanmoins, ces traitements ont le plus souvent des effets délétères sur les fonctions de reproduction. Chez la femme, la congélation des ovocytes par vitrification et la congélation du tissu ovarien permettent actuellement d’offrir la possibilité de préserver leur fertilité aux femmes et aux jeunes filles prépubères. Toutefois, lorsqu’une stimulation ovarienne est impossible, notamment chez les jeunes filles prépubères, ou contre-indiquée, seule la congélation de tissu ovarien est envisageable. La cryoconservation de tissu ovarien reste à optimiser car elle nécessite de préserver des fragments de cortex ovarien afin qu’ils puissent reprendre une fonction de folliculogenèse et de maturation folliculaire après leur autogreffe associée plus ou moins à une fécondation in vitro.

L’objectif de ce projet est de comparer l’efficacité de 3 protocoles de congélation lente et un protocole de vitrification de tissu ovarien sur la qualité de conservation du cortex ovarien post-décongélation (en comparaison avec les tissus frais) et la fonctionnalité du cortex ovarien après la mise en culture in vitro. Pour mener à bien ce projet, une analyse statique permettra d’évaluer la structure histologique en microscopie optique du tissu par l’évaluation de la densité et la morphologie folliculaires. Une analyse fonctionnelle permettra d’évaluer la vitalité folliculaire et la balance prolifération et d’apoptose / d’autophagie par une approche cellulaire (coloration vitale epifluorescente, immunohistochimie, immunofluorescence et western blot) et moléculaire (qPCR).

Techniques mises en œuvre par le stagiaire :
-  Cryobiologie
- Biologie cellulaire notamment la culture cellulaire, histologie, immunohistochimie, immunofluorescence, western blot
-  Biologie moléculaire notamment qPCR

Documents joints

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